File:QPCR results - amplification plot and melting curves.png

From Wikimedia Commons, the free media repository
Jump to navigation Jump to search

Original file (2,479 × 4,382 pixels, file size: 3.42 MB, MIME type: image/png)

Captions

Captions

Add a one-line explanation of what this file represents

Summary

[edit]
Description
Українська: Цей файл в конкурсі участі не бере і не буде оцінюватися (бо автор – організатор і член журі конкурсу). Проте зображення потрібне для ілюстрації деяких статей, і автор давно хотіла його зробити – а тут такий гарний привід =)

Опис зображення:Результати полімеразної ланцюгової реакції у реальному часі з використанням мітки SYBR Green та праймерів для трьох генів Rattus norvegicus: Actb, Entpd3 та Ache (на всіх діаграмах показані, відповідно, червоним, фіалковим і синьо-зеленим кольорами).
А. Крива ампліфікації реакції. При кожному циклі (вісь абсцис, від 0 до 45 циклів) кількість продукту реакції збільшується. При чому збільшується непропорційно. Перші цикли – допорогові значення, прилад не здатен гарно зафіксувати флуорисценцію зодна – на графіку це показано невпоряткованими кривими та ламаними лініями. При досягенні порогового циклу продукт реакції починає рости логарифмічно – пряма лінія графіку. При кожному наступному циклі продукту стає вдівічі більше. Саме на цій стадії бажано брати результати qPCR для розрзахунку (три горизонтальні лінії на графіку). Далі продукти реакції виходять на плато: зі збільшенням циклу продуктів більше не стає. Видно навіть без розрахунків, що продукти гену Actb, що є "геном домашнього господарства" і його багато в кожній клітині виходять з підпорогових циклів раніше двох інших генів (червоні лінії).

B. C. криві плавлення реакції. Після закінчення ампліфікації для перевірки специфічності продуктів проводиться крива плавлення. Градуйоване підвищення температури з 60°C до 95°C (вісь абсцис) призводить до того, що в певний температурний момент дволанцюгова молекула ДНК розплітається на 2 одноланцюгові (тобто, плавиться). В цей момент інтенсивність свічення різко падає (добре видно в C). Точка плавлення дуже залежить від довжини молекули ДНК. В ідеалі при наявності в пробі лише одного, специфічного продукту реакції пік кривої плавлення буде один на досить високих температурах. В даному випадку найкоротшим є фрагмент кДНК гену Entpd3 і плавиться він при 81°C. Фрагменти кДНК Actb та Ache є довшими і плавляться при трохи вищих температурах. Всі фрагменти: 133-204 bp. Проте дана реакція містила декілька неспецифічних фрагментів і вони видні у вигляді додаткових кривих плавлення. Такі проби не беруться далі в аналізі результатів а відбраковуються.
English: This image is made by one of the local juries and organizers of the contest. The image is not part of the contest, and will not participate in the competition and will not be rated. But it was helluva fun to make =) and some articles really need illustrations.
Image description: qPCR results with SYBR Green I fluorescent probe and using primers for Actb, Ache and Entpd3 mRNAs of Rattus norvegicus genes (all diagrams have the tree aforementioned genes differently colored).
A. Amplification plot of the reaction. Each cycle (abscissa, 1-45 cycles) has an increasing amount of the product. First few cycles have not enough product to be detectable (shown as rigged lines). After threshold cycle the reaction enters logarithmic phase where the product doubles each cycle. This phase is represented by strait line. The analysis of any qPCR reaction should be done in this particular phase (tree horizontal lines on the graph are represent the sampling of results). Afterwards reaction reaches a plateau stage: no matter how many cycles pass, the mount of product doesn't increase but stays the same. At this particular graph the samples of Actb mRNA, which is a product of Actb "housekeeping" gene and is present in medium/high quantities in each tissue, reached threshold cycle earlier than Ache and Entpd3 – higher quantity of Actb is evident even without analyzing the reaction (which was done afterwards anyway ;) )
B.,C. Melting curve of the reaction shown in derivative and normalized ways (the melting curve reaction is the same, just two different ways to show it). After the qPCR reaction is completed it should be checked for specificity. For this the products are gradually heated from 60°C to 95°C (abscissa). At some temperature point each double-stranded DNA breaks down (melts) into two single strands, and the fluorescence drops down rapidly. Depending on the product size this melting point occurs at higher or lower temperatures. In this particular reaction the Entpd3 amplicons reach melting point around apx 81°C while Actb and Ache ones are a bit longer and melt at slightly higher temperatures. All three products have sizes between 133-204 bp. An ideal reaction has only one melting point for each product (three amplicons should have slightly different three melting points – depending on their size and C/G content). If any unspecific product is present (e.g. primer dimers) melting curve shows several peaks (graph B). Such samples should be omitted.
Date
Source Own work
Author Helixitta

Licensing

[edit]
I, the copyright holder of this work, hereby publish it under the following license:
w:en:Creative Commons
attribution share alike
This file is licensed under the Creative Commons Attribution-Share Alike 4.0 International license.
You are free:
  • to share – to copy, distribute and transmit the work
  • to remix – to adapt the work
Under the following conditions:
  • attribution – You must give appropriate credit, provide a link to the license, and indicate if changes were made. You may do so in any reasonable manner, but not in any way that suggests the licensor endorses you or your use.
  • share alike – If you remix, transform, or build upon the material, you must distribute your contributions under the same or compatible license as the original.


File history

Click on a date/time to view the file as it appeared at that time.

Date/TimeThumbnailDimensionsUserComment
current18:29, 5 October 2015Thumbnail for version as of 18:29, 5 October 20152,479 × 4,382 (3.42 MB)Helixitta (talk | contribs)User created page with UploadWizard

There are no pages that use this file.

File usage on other wikis

Metadata